Microscopie

Techniques de microscopie (MO + épifluorescence, Microscopie confocal, MEB, MET, AFM...)

Présentation des techniques d’imagerie dites de « Microscopie » dédiées à l’étude des objets de petites dimensions autorisant des résolutions submicrométriques.

On distingue principalement trois types de microscopies : la microscopie optique (classique, à épifluorescence, confocal), la microscopie électronique (MEB, MET) et la microscopie à sonde locale (Microscope à force atomique AFM). Des exemples de travaux ainsi que le principe des méthodes sont donnés dans la rubrique "Ressources"

LaboratoireMatériel, logiciels associés, exemples d'étudeContact
Arc’Antique Nantes

-MO
-MEB-EDS

Charlène Pelé (arcantique.recherche@wanadoo.fr)
CEPAM-UMR 7264 CNRS Nice

- MO : à réflexion Leica 50 à 1000x (4), à transmission Leica 200 à 1000x (4), caméras Leica et Olympus (2/4)
- Logiciels analyse/traitement image : LAS Leica, Screem Olympus

Isabelle Théry (isabelle.thery@cepam.cnrs.fr)

CIMAP CaenMET, MEBChristophe Poilâne (christophe.poilane@unicaen.fr)
LaMCos Insa LyonMOHubert Maigre (hubert.maigre@insa-lyon.fr)
LMGC Montpellier

- MO : Leica DMLP 1885, lumière polarisée, lampe UV, réflexion/transmission, ImageJ – inversé Zeiss.
- Microtomes : Rotatif Leica RM2265, A glissière Gärtner
- AFM : 4 de marque Bruker (Veeco), pour grand échantillons, environnemental
Contact : Michel Ramonda, michel.ramonda@univ-montp2.fr.

Olivier Arnould (olivier.arnould@univ-montp2.fr)
PIAF UMR 547, INRA Clermont-Ferrand

-Microscope optique laborlux K équipé d’une caméra infinity de lumenera à l’aide du logiciel infinity capture
-Microtome à glissière Reichert avec ou sans module Peltier + Microtome auto-rétractable Leica RM2165 avec ou sans module Peltier
-Traitement d’image via ImageJ
Fiche technique PIAF

Eric Badel (eric.badel@clermont.inra.fr)
Pierre Conchon (pierre.conchon@clermont.inra.fr)

LGPM, Supélec Paris

-Microscope électronique environnemental ESEM FEI QUANTA 200
- Microscope confocal ZEISS LSM 700, Spectrométrie Raman WITEc 300 Alpha R+
-Microtopographe STIL CHR 150, Microscope interférométrique 3D ZYGO NewView 6300 pour l’analyse de surface,
- MO + épifluorescence
-Microtome Thermo Scientific Microm HM450
-Traitement image : Meshpore (logiciel maison)
Lien Web

Patrick Perré (patrick.perre@ecp.fr)
Floran Pierre (floran.pierre@ecp.fr)

Centre de Bio-Archéologie et d’Écologie
(CBAE) UMR 5059, Montpellier

-MO (à réflexion Olympus et Leica 50 à 1000x, à transmission Leica 200 à 1000x), caméras Leica, loupes binoculaires, dendrochronologie (binoculaire Leica, table de mesure, ordinateurs Dell, logiciels Tsapwin, Arstan, Cofecha, CooRecorder, CDendro et scanner)
-Microtome rotatif (Leica RM 2125RT), pompe à vide
-Logiciels analyse/traitement image : LAS Leica, WinSeedle, Helicon Focus
-Études : paléoécologie (Holocène), écoanatomie (vigne, olivier...), dendroécologie
 

Sarah Ivorra (ivorra@univ-montp2.fr)
Lucie Chabal (chabal@univ-montp2.fr)

École Supérieure du bois, Nantes

-Microscope électronique à Balayage Quanta 250, fabriqué par FEI (année 2011) : Mode Haut Vide (<6*10-4 Pa), Mode « Low Vacuum » ou vide dégradé (10 à 130 Pa) (260 avec le GAD ou GSED-GAD), Mode ESEM™ (10 à 2600 Pa)
-EDAX (APOLLO X Silicon Drift Detector)
-Détecteur Wet STEM pour mesurer les particules en solution
-Platine de traction avec capteurs de force de 2 ou 200 N
lien web

Mark Irle ( mark.irle@esb-campus.fr)

Laboratoire de recherche et de restauration du Musée de la musique
Cité de la musique, Paris

-Microscope in situ Zeiss Scope A1 (BF Bright Field, lampe halogène - DF Dark Field  lampe halogène - Fs01 Cube pour flurorescence à 365 nm, lampe à vapeur de mercure - Fs05 Cube pour fluorescence 405-435 nm dans le bleu - 4 Objectifs : 5x, 10x, 20x, 50x, profondeurs de 8 mm à 1 cm)
-Caméra Leica
-Compétences : Identification des bois des instruments de musique anciens des collections patrimoniales
Références Cité de la musique
Lien Web 

Stéphane Vaiedelich (svaiedelich@cite-musique.fr)
Cirad/Biowooeb, Montpellier

- UR BioWooEB : microscope binoculaire, microtome
- Lien Plate-forme d’histocytologie et d’imagerie végétale PHIV
-Binoculaire, Microscopie à épifluorescence, Microscope confocal et multiphoton (visualisation des molécules et des activités biologiques in situ).
– Microtomes, Vibratomes
Fiche technique BioWoodEB

Kevin Candelier (kevin.candelier@cirad.fr)
Jean Luc Verdeil (jean-luc.verdeil@cirad.fr)

UMR EcoFog, Kourou

-Microscope Olympus BX60 équipé d’un dispositif d’épifluorescence, un microtome LEITZ, cryotome LEITZ, hotte et dispositif de coloration, deux loupes binoculaires, ordinateur dédié avec un logiciel de traitement d’image,
-Microscope digital confocal laser Keyence VX 9700, grossissement 18000X avec une reconstruction de l’image en 3D
lien web

Bruno Clair (bruno.clair@cnrs.fr)

Plateforme Silvatech, Silva Nancy

- Microscopes optiques Zeiss : AxioImagerM2 et AxioPlan, Macroscope WILD M420, équipés de caméras numériques CCD Sony progressiv scan.
- Automate d'inclusion MICROM STP 120 et Station d'enrobage en paraffine MICROM Myr + Microtomes à glissière : Microm HM440E, Reichert-Jung Hn-40, Leica Jung SM 2000 et Microtome rotatif MICROM HM 355 S
- MEB (Leo-Zeiss), filament tungstène. Pression contrôlée, vide conventionnel. Mode cryogénique à -120°C. Analyse chimique : EDS/WDS
- A venir, Microscope à effet de champs
- Traitement image : Aphelion
lien plate-forme Xylosciences

Julien Ruelle (julien.ruelle@nancy.inrae.fr)
Christophe ROSE (rose@nancy.inrae.fr)
LCSN EA1069, Limoges

- Microscope Leica épifluoréscence, ZEISS Confocale, microtome, vibratome cryostat, ultramicrotome
- Microscope Raman et IR

Guy Costa (guy.costa@unilim.fr)
Fabienne Bareigne

 

Date de modification : 29 janvier 2024 | Date de création : 24 août 2017 | Rédaction : Sabine Caré